Neue Gruppenleiterin am ZML

Unsere Forschung konzentriert sich auf vesikuläre und nicht-vesikuläre Membrantransportprozesse in neuronalen und anderen erregbaren Zellen, die eine grundlegende Rolle in der zellulären Kommunikation spielen. Vesikuläre Transporter transportieren und sekretieren Biomoleküle wie Neurotransmitter, Lipide, Peptide und Hormone mittels Anlagerung und Fusion und sind für die Ca2+-vermittelte Exozytose unverzichtbar. Zusätzlich zu den vesikulären Transportwegen kommunizieren Zellen über nicht-vesikuläre Wege an Membrankontaktstellen, die an den Schnittstellen zwischen Organellen gebildet werden. Neue Erkenntnisse deuten auf einen tiefgreifenden Einfluss von Membrankontaktstellen auf die Lipid- und Ionenhomöostase, die Membranbiogenese und die Modulation der Ca2+-vermittelten Freisetzung hin. Dementsprechend wird eine Dysfunktion der Membrankontaktstellen unter anderem mit neurodegenerativen Erkrankungen und Stoffwechselstörungen in Verbindung gebracht. Der jeweilige Beitrag des vesikulären und nicht-vesikulären Transports zur neuronalen Funktion und die genaue räumlich-zeitliche Regulation des Membrantransports in gesunden und erkrankten Neuronen sind jedoch noch ungeklärt. 
Wir wollen die zugrunde liegenden Mechanismen aufklären, indem wir die molekularen Mechanismen analysieren, die diese Prozesse steuern, und indem wir neue Kandidaten und Interaktionspartner identifizieren, die an der neuronalen Membrandynamik beteiligt sind. Dabei konzentrieren wir uns auf die C2-Domänen-Proteinfamilie der Ferline, bei denen es sich um membranverankerte Proteine handelt, die die Ca2+-sensitive Membrandynamik in auditorischen Synapsen und Muskelzellen koordinieren. Mutationen in diesen Proteinen verursachen Hörstörungen (Otoferlin), Muskeldystrophie (Dysferlin und Myorferlin) und Krebs (Myorferlin). Eine neue Forschungslinie zielt darauf ab, die Rolle von Proteinen mit doppelter Funktion der C2-Domäne an Membrankontaktstellen zu analysieren. 
Methodisch verfolgt meine Gruppe einen Bottom-up-Ansatz und untersucht Membranproteine, die in künstliche Membranen rekonstituiert wurden, sowie isolierte Organellen außerhalb ihrer natürlichen zellulären Umgebung.